Зубодесневая жидкость: значение в диагностике заболеваний пародонта

Зубодесневая жидкость: значение в диагностике заболеваний пародонта

Löe и Holm-Pedersen сообщают, что количество выделяемой зубодесневой жидкости прямо пропорционально тяжести воспаления, таким образом, определение этого показателя является важным критерием оценки здоровья десен \ тканей пародонта. [1]

Большинство авторов сходится во мнении, что анализ зубодесневой жидкости – неинвазивное диагностическое мероприятие, позволяющее с высокой степенью достоверности определить патофизиологическое состояние тканей пародонта в определенном месте [2].

Диагностическое значение зубодесневой жидкости возрастает с учетом бессимптомного характера течения гингивитов (при отсутствии такого характерного его проявления, как кровотечения): объем и интенсивность выделения зубодесневой жидкости являются индикаторами изменений в проницаемости сосудистой стенки и ранних стадий воспалительного процесса [68].

Зубодесневая жидкость как биоматериал

Зубодесневая жидкость секретируется неизменно [1, 4, 5]. Зубодесневая жидкость представляет собой сложную композицию из субстанций, дериват сыворотки крови, лейкоцитов, структурных клеток периодонта, а также микроорганизмов полости рта. Зубодесневая жидкость – по сути, результат взаимодействия между бактериальной пленкой, прикрепленной к поверхности зуба, и клетками тканей пародонта.

Низкий уровень выделения зубодесневой жидкости ассоциируется со здоровой тканью, в то время как высокий уровень выделения зубодесневой жидкости указывает на воспалительный процесс в тканях. Визуальные признаки воспаления были неоднократно связаны с повышенным уровнем выделения зубодесневой жидкости, а также с кровоточивостью десен [6–14].

Высокий уровень выделения зубодесневой жидкости наблюдается в участках с многокорневыми зубами по сравнению с однокорневыми. По всей видимости, это связано с затруднениями, с которыми сталкиваются пациенты при рутинном уходе за полостью рта и других гигиенических мероприятиях, а также с особенностями анатомии коренных зубов (наличие масштабных крупных неровностей, обильная васкуляризация). [15].

Ключевые особенности проведения теста

Löe& Holm-Pedersen пришли к выводу, что для получения достоверных показателей количества зубодесневой жидкости бумажные полоски должны располагаться на входе десневой бороздки (то есть вне десневой бороздки), а не внутри десневой бороздки (метод, предложенный Brill & Krasse в 1958 году). Бумажная полоска вводится до тех пор, пока не ощущается некоторое сопротивление. Эти методологические различия, вероятно, влияют на результаты теста, поскольку даже очень осторожное и постепенное введение в десневую бороздку причиняет достаточно повреждений, изменяя тем самым проницаемость эпителия и, следовательно, увеличивая в итоге количество зубодесневой жидкости. [10].

Методики проведения теста: сравнительный анализ

Для сбора зубодесневой жидкости было разработано несколько методик, такие как:

  • метод десневой промывки [16],
  • использование микрокапиллярных трубок и микропипеток [17],
  • сбор при помощи бумажных полосок с абсорбционным фильтром [1].

Основным недостатком метода стирки промывки то, что он не предоставляет информацию об объеме собранной зубодесневой жидкости. А метод капиллярной трубки, хотя и позволяет измерить различное количество зубодесневой жидкости, занимает гораздо больше по сравнению с другими методиками времени (около 30 минут на один участок). Следует также упомянуть, что использование микрокапиллярных трубок может не только повлиять на измерение объема и компоненты собранной жидкости, но и травмировать ткань.

В то же время сбор при помощи бумажных полосок с абсорбционным фильтром является быстрым, простым в использовании, минимально инвазивным тестом. Таким образом, методика забора зубодесневой жидкости при помощи бумажных полосок с абсорбционным фильтром традиционно является методом выбора. На сегодня в стоматологии доступны различные типы полосок с абсорбционным фильтром.

Поскольку диагностическое значение определения объема зубодесневой жидкости очень велико, был разработан ряд методов для его измерения через абсорбцию: колориметрия, взвешивание и использование электронных устройства (например, Periotron®). Все они валидны, однако последний признан предпочтительным: современное оборудование достаточно точно измеряет электроемкость полосы фильтровальной бумаги, а программное обеспечение потом преобразует эти данные в стандартные единицы объема. Впрочем, здесь тоже есть свои нюансы: требуется, чтобы такой тест проводился немедленно после забора, чтобы избежать испарения биоматериала.

Помимо этого, точности оценки состояния зубодесневой жидкости могут помешать и другие операционные и технические аспекты, такие как:

  • время проведения забора образцов;
  • загрязнение образцов кровью, слюной и зубным налетом;
  • температура и влажность воздуха.

Как учет этих аспектов, так и контроль над ними гарантируют, что результаты диагностики будут достоверно отражать фактическое состояние исследуемой ткани. Например, предварительные исследования продемонстрировали, что полоски бумаги с абсорбционным фильтром должны оставаться на участке в течение 5 секунд [18].

С целью увеличения объема получаемой зубодесневой жидкости, валидной для последующих лабораторных исследований также были разработаны альтернативные методики проведения теста. Одна из предусматривает фиксацию бумажной полоски у входа в десневую бороздку в течение 30 секунд, другая – в течение или 3 минут. Исходя из результатов исследований, сравнивавших эти подходы, авторы рекомендуют ограничить время сбора 30 секундами, чтобы таким образом минимизировать риск инфицирования десен. Тем не менее, остается еще одна проблема с продлением времени сбора материала, которая заключается в том, что характер проб зубодесневой жидкости может измениться, особенно в отношении концентрации белковой составляющей. [1, 8]

Таким образом, стандартные клинические измерения, используемые для определения уровня воспаления десен, могут быть менее чувствительными, чем этот тест, демонстрирующий более высокую диагностическую точность, на ранних стадиях гингивита в частности и при более тяжелых заболеваниях тканей пародонта. [18, 20]


Литература

  1. LOE H, HOLM-PEDERSEN P. ABSENCE AND PRESENCE OF FLUID FROM NORMAL AND INFLAMED GINGIVAE. Periodontics. 1965; 3: 171- 177.
  2. Uitto VJ, Overall CM, McCulloch C. Proteolytic host cell enzymes in gingival crevice fluid. Periodontol 2000. 2003; 31: 77-104.
  3. Darany DG, Beck FM, Walters JD. The relationship of gingival fluid leukocyte elastase activity to gingival fluid flow rate. J Periodontol. 1992; 63: 743-747.
  4. Del Fabbro M, Francetti L, Bulfamante G, Cribiù M, Miserocchi G, Weinstein RL. Fluid dynamics of gingival tissues in transition from physiological condition to inflammation. J Periodontol. 2001; 72: 65-73.
  5. Brill N, Krasse B. Passage of tissue fluid into the clinically healthy gingival pocket. Acta Odontol Scand. 1958; 16: 233-245.
  6. Nowicki D, Vogel RI, Melcer S, Deasy MJ. The gingival bleeding time index. J Periodontol. 1981; 52: 260-262.
  7. Oliver RC, Holm-Pederen P, Loe H. The correlation between clinical scoring, exudate measurements and microscopic evaluation of inflammation in the gingiva. J Periodontol. 1969; 40: 201-209.
  8. Rudin HJ, Overdiek HF, Rateitschak KH. Correlation between sulcus fluid rate and clinical and histological inflammation of the marginal gingiva. Helv Odontol Acta. 1970; 14: 21-26.
  9. Brill N, Krasse B. Passage of tissue fluid into the clinically healthy gingival pocket. Acta Odontol Scand. 1958; 16: 233-245.
  10. Egelberg J. Vascular permeability of chronically inflamed gingivae. J Periodontal Res. 1967; 2: 9-39.
  11. Egelberg J. Gingival exudate measurements for evaluation of inflammatory changes of the gingiva. Odont Revy. 1964; 15: 381-398.
  12. Engelberger T, Hefti A, Kallenberger A, Rateitschak KH. Correlations among Papilla Bleeding Index, other clinical indices and histologically determined inflammation of gingival papilla. J Clin Periodontol. 1983; 10: 579-589.
  13. Hancock EB, Cray RJ, O’Leary TJ. The relationship between gingival crevicular fluid and gingival inflammation. A clinical and histologic study. J Periodontol. 1979; 50: 13-19.
  14. Shapiro L, Goldman H, Bloom A. Sulcular exudate flow in gingival inflammation. J Periodontol. 1979; 50: 301-304.
  15. Goodson JM. Gingival crevice fluid flow. Periodontol 2000. 2003; 31: 43-54.
  16. Skapski H, Lehner T. A crevicular washing method for investigating immune components of crevicular fluid in man. J Periodontal Res. 1976; 11: 19-24.
  17. Sueda T, Bang J, Cimasoni G. Collection of gingival fluid for quantitative analysis. J Dent Res. 1969; 48: 159.
  18. Griffiths GS. Formation, collection and significance of gingival crevice fluid. Periodontol 2000. 2003; 31: 32-42.
  19. Curtis MA, Griffiths GS, Price SJ, Coulthurst SK, Johnson NW. The total protein concentration of gingival crevicular fluid. Variation with sampling time and gingival inflammation. J Clin Periodontol. 1988; 15: 628-632.
  20. Champagne CM, Buchanan W, Reddy MS, Preisser JS, Beck JD, Offenbacher S. Potential for gingival crevice fluid measures as predictors of risk for periodontal diseases. Periodontol 2000. 2003; 31: 167-180.